먹는물수질공정시험기준 개정(안) 전‧후 대비표

공정시험기준

(ES 번호, 시험기준명)

개정 전

개정 후

개정사유

ES 05000.d

총칙

5.15 시험결과의 표시는 표시한계 및 결과표시(ES 05003.e)에 따르며, 정량한계 미만은 불검출된 것으로 간주한다. 다만, 정도관리/정도보증의 절차에 따라 시험하여 목표값보다 낮은 정량한계를 제시한 경우에는 정량한계 미만의 시험결과를 표시할 수 있다.

5.22 미생물을 다루는 실험에서 사용된 배지, 기구 등을 폐기할 경우에는 반드시 멸균하여 미생물을 불활성화 시킨 후, 환경부장관이 고시한 전용용기에 보관하며 의료폐기물 처리기준에 준하여 처리하여야 한다.

5.15 시험성적서 등 공표되는 시험결과의 표시는 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시(ES 05003.f)에 따른다. 다만, 시험기록부, 검사기록부 등 시험ㆍ검사기록 원자료에는 개별 시험방법의 정도관리 목표 정량한계 및 결과표시 자릿수에 따라 기록하며, 정도관리/정도보증의 절차에 따라 시험하여 목표값보다 낮은 정량한계를 제시한 경우에는 그 정량한계를 기준으로 시험결과를 기록할 수 있다.

5.22 미생물을 다루는 실험에서 사용된 배지, 기구 등을 폐기할 경우에는 반드시 멸균하여 미생물을 불활성화시킨 후 배출하여야 한다.

문구 명확화

- 지자체 시험기관은 의료폐기물 처리기관이 아니므로 문구를 조정

ES 05003.f

먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시

NO	성분명	수질기준	시험결과표시한계	시험결과표시자릿수
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17	크롬	0.05 mg/L 이하	0.02 mg/L	0.00
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39	총트리할로메탄	0.1 mg/L 이하	0.001 mg/L	0.000
⁝	⁝	⁝	⁝	⁝
51	구리 (동)	1 mg/L 이하	0.008 mg/L	0.000
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NO	성분명	수질기준	시험결과표시한계	시험결과표시자릿수
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17	크롬	0.05 mg/L 이하	0.008 mg/L	0.000
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39	총트리할로메탄	0.1 mg/L 이하	0.003 mg/L	0.000
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51	구리 (동)	1 mg/L 이하	0.004 mg/L	0.000
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개별 시험법의 정량한계 고려하여 일관성 갖도록 수정

ES 05130.d

시료채취와 보존

표 1. 항목별 시료용기, 보존방법, 보존기간

구분	항목	시료용기	보존방법	보존기간
일반항목	⁝	⁝	⁝	⁝
	맛	G	-	-
	⁝	⁝	⁝	⁝
	탁도	P, G	0 ℃ ～ 4 ℃ 보관	48시간
	⁝	⁝	⁝	⁝
	잔류염소	P, G	즉시분석	-

표 1. 항목별 시료용기, 보존방법, 보존기간

구분	항목	시료용기	보존방법	보존기간
일반항목	⁝	⁝	⁝	⁝
	맛	G	가능한 즉시 분석, 0 ℃ ～ 4 ℃ 보관	-
	⁝	⁝	⁝	⁝
	탁도	P, G	가능한 즉시 분석, 0 ℃ ～ 4 ℃ 보관	48시간
	⁝	⁝	⁝	⁝
	잔류염소	G	즉시분석	-

개별 시험법 및 국외 공인시험방법에 부합하도록 수정

ES 05307.1d

증발잔류물

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 유리병에 채취하고 가능한 빨리 측정한다.

6.1 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 그 값이 영에 가까워야 한다.

8.1 계산

…… (식 1)

여기서, a : 건조시료 증발접시와 증발접시의 무게차(mg)

여기서, b : 시료량(mL)

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d 의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 유리 또는 폴리에틸렌 용기에 채취하고 가능한 빨리 측정한다.

6.1 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0 분석절차와 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 그 값이 영에 가까워야 한다.

8.1 계산

…… (식 1)

여기서, a : 건조시료 증발접시와 증발접시의 무게차(mg)
b : 시료량(mL)

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

총칙의 시료채취와 보존(ES 05130.c) 및 국외 공인시험방법에 부합하도록 수정

용어 표기 통일

문구 수정

개정된 분류번호로 수정

ES 05308.1d

탁도

1.2 적용범위

1.2.2 시료 중에 탁도의 정량한계는 0.02 NTU이고 정량범위는 0.02 NTU ～ 400 NTU이다.

3.0 분석기기 및 기구

3.1 탁도계

광원부와 광전자식 검출기를 갖추고 있으며 정량한계가 0.02 NTU 이상인 NTU(nephelometric turbidity units) 탁도계로서 ……

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 유리병에 채취하고 가능한 빨리 측정한다.

6.1 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ분석한다.

6.3 정밀도

6.3.1 …… 정제수에 정량한계의 1 배 ～ 2 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

1.2 적용범위

1.2.2 시료 중 탁도의 정량한계는 0.02 NTU이고 정량범위는 0.02 NTU ～ 400 NTU이다.

3.0 분석기기 및 기구

3.1 탁도계

광원부와 광전자식 검출기를 갖추고 있으며 정량한계가 0.02 NTU 이상인 NTU 탁도계로서 ……

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 유리 또는 폴리에틸렌 용기에 채취하고 가능한 빨리 측정한다.

6.1 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0 분석절차와 동일하게 전처리ㆍ분석한다.

6.3 정밀도

6.3.1 …… 정제수에 정량한계의 1 배 ～ 2 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

문구 수정

표준화 지침 부합화

총칙의 시료채취와 보존(ES 05130.c) 및 국외 공인시험방법에 부합하도록 수정

용어 표기 통일

- 용어 표기 통일

개정된 분류번호로 수정

ES 05309.2b

세제(음이온계면활성제)-연속흐름법

3.1 자동분석기(autoanalyzer)

3.1.3 반응기

…… 10.0항의 그림 1 또는 각 자동분석기에서 요구되는 규격 같이 구성할 수 있다.

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantiation)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 분석물질을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0항의 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

9.0 참고자료

9.2 KSI ISO 16265:2011, "수질-연속흐름분석기법을 이용한 메틸렌블루활성물질 (MBAS) 지수의 측정“, 산업표준심의회 (2016)

10.0 부록

표 1. 정도 관리 목표 값

정도관리 항목	정도관리 목표
정량한계	0.1 mg/L
검정곡선	결정계수(R2) ≥ 0.98 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차 ≤ 25 %
정밀도	상대표준편차 ± 25 % 이내
정확도	75 % ～ 125 %
현장이중시료	상대편차백분율 ± 25 % 이내

3.1 자동분석기(autoanalyzer)

3.1.3 반응기

…… 10.0 부록의 그림 1 또는 각 자동분석기에서 요구되는 규격 같이 구성할 수 있다.

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(MDL, method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantiation)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 분석물질을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0 분석절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

9.0 참고자료

9.2 KS I ISO 16265, "수질-연속흐름분석기법을 이용한 메틸렌블루활성물질 (MBAS) 지수의 측정“, 환경부 (2016)

10.0 부록

표 1. 정도 관리 목표 값

정도관리 항목	정도관리 목표
정량한계	0.1 mg/L
검정곡선	결정계수(R2) ≥ 0.98 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차 ≤ 15 %
정밀도	상대표준편차 ± 25 % 이내
정확도	75 % ～ 125 %
현장이중시료	상대편차백분율 ± 25 % 이내

용어 표기 통일

표준화 지침 부합화,  용어 표기 통일

용어 표기 통일

- 용어 표기 통일

- 개정된 분류번호로 수정

오자 수정

오자 수정

ES 05310.3a

잔류염소-DPD 분광법

1.2 적용범위

1.2.3 이 시험기준은 먹는물 중에 잔류염소 0.02 mg/L ～ 2.0 mg/L의 농도범위에서 적절하며 먹는물 중에 0.02 mg/L의 정량한계를 갖는다.

6.1 바탕시료

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 측정한다.

7.0 분석절차

7.1.4 2분간 안정화시킨다.

7.1.5 515 nm 파장에서 흡광도를 측정하여 결과값을 도출한다.

1.2 적용범위

1.2.3 이 시험기준은 먹는물 중에 잔류염소 0.02 mg/L ～ 2.0 mg/L의 농도범위에서 적절하며 0.02 mg/L의 정량한계를 갖는다.

6.1 바탕시료

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0 분석절차와 동일하게 측정한다.

7.0 분석절차

7.1.4 기포가 발생하지 않도록 조심스레 잘 섞어 시약을 녹인 다음 즉시 분석한다.

7.1.5 515 nm 또는 기기에서 정해진 파장에서 흡광도를 측정하여 결과값을 도출한다.

중복된 표현 삭제

용어 표기 통일

국외 공인시험방법 등에 부합하고 합리적으로 수정

ES 05311.2b

페놀류-연속흐름법

2.2 분할흐름분석기

분할흐름분석기(SFA, segmented flow analyzer)란 연속흐름분석기(continuous flow analyzer)의 일종으로 다수의 시료를 연속적으로 자동분석하기 위하여 사용한다. ……

5.1 시료 1 L에 대하여 황산동 1 g와 인산을 넣어 pH 4로 하여 산성화시켜 생물학적 분해를 방지한다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantiation)는 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따라 측정한다. 정제수에 정량한계 부근의 농도가 되도록 시안표준용액을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0항의 실험절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.3 검정곡선의 작성 및 검증

6.3.1 검정곡선의 작성 및 검증은 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따른다. 정량범위 내의 5개의 농도에 대해 검정곡선을 작성하고 얻어진 검정곡선의 결정계수(R2)가 0.98 이상 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차가 15 % 이내이어야 하며 결정계수나 감응계수의 상대표준편차가 허용범위를 벗어나면 재작성 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d 의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

2.2 분할흐름분석기

분할흐름분석기(SFA, segmented flow analyzer)란 연속흐름분석기(CFA, continuous flow analyzer)의 일종으로 다수의 시료를 연속적으로 자동분석하기 위하여 사용한다. ……

5.1 시료 1 L에 대하여 황산동 1 g과 인산을 넣어 pH 4로 하여 산성화시켜 생물학적 분해를 방지한다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(MDL, method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantiation)는 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따라 측정한다. 정제수에 정량한계 부근의 농도가 되도록 시안표준용액을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0 분석절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.3 검정곡선의 작성 및 검증

6.3.1 검정곡선의 작성 및 검증은 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따른다. 정량범위 내의 5개의 농도에 대해 검정곡선을 작성하고 얻어진 검정곡선의 결정계수(R2)가 0.98 이상 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차가 25 % 이내이어야 하며 결정계수나 감응계수의 상대표준편차가 허용범위를 벗어나면 재작성 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

표준화 지침 부합화

오자 수정

표준화 지침 부합화,용어 표기 통일

용어 표기 통일

오자 수정

- 용어 표기 통일

개정된 분류번호로 수정

ES 05351.2c

불소이온-자외선/가시선 분광법

2.0 용어정의

“내용 없음”

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 미리 세척한 폴리에틸렌 또는 폴리테트라플루오로에틸렌(PTFE) 용기에

채취한다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(method detection limit) 및 정량한계(minimum quantitation limit)는 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따라 측정한다. 정제수에 정량한계 부근의 농도가 되도록 불소이온 표준용액을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0항의 실험절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.3 검정곡선의 작성 및 검증

6.3.1 정량범위 내의 5 개의 농도에 대해 검정곡선을 작성하고 얻어진 검정곡선의 결정계수(R2)가 0.98 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차가 15 % 이내이어야 하며 결정계수나 감응계수의 상대표준편차가 허용범위를 벗어나면 재작성한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d 의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

2.0  “내용 없음”

5.0 시료채취 및 관리

5.1 시료는 미리 세척한 폴리에틸렌 또는 폴리테트라플루오로에틸렌(PTFE) 용기에

채취한다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(MDL, method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantitation)는 ES 05001.a 정도보증/정도관리에 따라 측정한다. 정제수에 정량한계 부근의 농도가 되도록 불소이온 표준용액을 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0분석절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.3 검정곡선의 작성 및 검증

6.3.1 정량범위 내의 5 개의 농도에 대해 검정곡선을 작성하고 얻어진 검정곡선의 결정계수(R2)가 0.98 또는 감응계수(RF)의 상대표준편차가 15 % 이내이어야 하며 결정계수나 감응계수의 상대표준편차가 허용범위를 벗어나면 재작성한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 10 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

표준화 지침 부합화

총칙의 시료채취와 보존(ES 05130.c) 및 국외 공인시험방법에 부합하도록 수정

표준화 지침 부합화,용어 표기 통일

용어 표기 통일

오자 수정

용어 표기 통일

개정된 분류번호로 수정

ES 05400.1d

금속류-원자흡수분광광도법

1.2 적용범위

1.2.2 구리(동), 납, …… 분석한다.

1.2.3 낮은 농도의 …… 분석한다.

1.2.4 알루미늄 등의 …… 분석한다.

1.2.5 크롬 등의 금속류는 …… 낮다.

1.2.6 이 시험에 의한 …… 표 2와 같다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(method detection limit) 및 정량한계(minimum quantitation limit)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 각 금속류를 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0항의 실험절차와 동일하게 추출하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 1배 ~ 2 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 7000A, 1992, Atomic Absorption Methods

9.2 Standard Method 3110, 2005, Metals by atomic absorption spectrometry

9.3 Standard Method 3010 B, 2005, Metal Sampling and sample preservation

9.4 환경부, 먹는물 수질공정시험기준(2009, 9), ES 05400 금속류(Metals)

9.5 환경부, 수질오염공정시험기준(2009. 2), 제 22-33항 금속류

1.2 적용범위

1.2.2 물속에 있는 총 금속류는 다양한 상태로 존재하고 있으나, 통상은 산 등에 의해 시료를 분해시켜 총량을 측정한다.

1.2.3 다만, 용존성 금속류를 측정하는 경우에는, 시료를 여과(공극 0.45 μm 멤브레인 필터) 등에 의해 입자성 부유물을 제거한 후 산 등을 첨가하여 측정한다.

1.2.4 구리(동), 납, …… 분석한다.

1.2.5 낮은 농도의 …… 분석한다.

1.2.6 알루미늄 등의 …… 분석한다.

1.2.7 크롬 등의 금속류는 …… 낮다.

1.2.8 이 시험에 의한 …… 표 2와 같다.

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(MDL, method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantitation)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 각 금속류를 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0분석절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 1배 ~ 2배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 7000A, Atomic Absorption Methods, (1992)

9.2 Standard Method 3110, Metals by atomic absorption spectrometry, (2005)

9.3 Standard Method 3010 B, Metal Sampling and sample preservation, (2005)

9.4 먹는물수질공정시험기준, ES 05400.e 금속류, 환경부 (2018)

9.5 수질오염공정시험기준, ES 04400.0 금속류, 환경부 (2011)

다른 금속류 분석방법과 일관성을 갖도록 내용 추가 기술

표준화 지침 부합화,용어 표기 통일

용어 표기 통일

용어 표기 통일

개정된 분류번호로 수정

참고자료 표기 표준화 지침 부합화

ES 05400.3f

금속류-유도결합플라스마-질량분석법

1.2 적용범위

1.2.1 이 방법은 먹는물, 샘물, 염지하수 중에 구리(동), 납, 망간, 비소, 셀레늄, 아연, 알루미늄, 철, 카드뮴, 크롬, 붕소, 우라늄의 미량 용존 금속원소의 측정에 적용한다.

2.0 용어정의

“내용 없음”

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(method detection limit) 및 정량한계(minimum quantitation limit)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 각 금속류를 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0항의 실험절차와 동일하게 추출하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0항의 실험절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 1배 ~ 2 배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0항의 절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

7.0 분석절차

7.1 전처리

7.1.1 시료의 탁도가 1 NTU 이상일 경우 미세입자 및 부유물을 제거한다.

7.1.2 시료 100mL에 …… 넣는다.

7.1.3 내부표준물질법을 …… 사용한다.

7.1.4 염지하수의 …… 수행한다.

7.1.4.1 100mL 시료를 …… 조절한다.

7.1.4.2 유기착화제 …… 교반한다.

7.1.4.3 위 시료를 …… 준다.

7.1.4.4 15분간 시료용액과 …… 한다.

7.1.4.5 7.1.4.3과 …… 반복한다.

7.1.4.6 폴리테트라플루오로에틸에틸렌 …… 한다.

7.1.4.7 농축배수를 …… 재용해시킨다.

7.1.5 염지하수의 …… 있다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.d의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

1.2 적용범위

1.2.1 이 방법은 먹는물, 샘물, 염지하수 중에 구리(동), 납, 망간, 비소, 셀레늄, 아연, 알루미늄, 철, 카드뮴, 크롬, 붕소, 우라늄 등의 금속류 측정에 적용한다.

2.0  “내용 없음”

6.1 방법검출한계

6.1.1 방법검출한계(MDL, method detection limit) 및 정량한계(LOQ, limit of quantitation)는 정량한계 부근의 농도가 되도록 각 금속류를 첨가한 시료 7 개를 준비하고 각 시료를 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 표준편차를 구한다.

6.2 방법바탕시료의 측정

…… 방법바탕시료는 정제수를 사용하여 7.0분석절차와 동일하게 전처리ㆍ측정하며 측정값은 방법검출한계 이하이어야 한다.

6.4 정확도 정밀도

6.4.1 …… 정제수에 정량한계의 1배 ~ 2배 농도가 되도록 동일하게 표준물질을 첨가한 시료를 4 개 이상 준비하고 7.0 분석절차와 동일하게 측정하여 평균값과 표준편차를 구한다.

7.0 분석절차

7.1 전처리

7.1.1 시료의 탁도가 1 NTU 이상일 경우 미세입자 및 부유물을 제거한다.

7.1.1 시료 100mL에 …… 넣는다.

7.1.2 내부표준물질법을 …… 사용한다.

7.1.3 염지하수의 …… 수행한다.

7.1.3.1 100mL 시료를 …… 조절한다.

7.1.3.2 유기착화제 …… 교반한다.

7.1.3.3 위 시료를 …… 준다.

7.1.3.4 15분간 시료용액과 …… 한다.

7.1.3.5 7.1.3.3과 …… 반복한다.

7.1.3.6 폴리테트라플루오로에틸에틸렌 …… 한다.

7.1.3.7 농축배수를 …… 재용해시킨다.

7.1.4 염지하수의 …… 있다.

8.2 결과보고

행정사항과 관련된 항목별 시험결과의 표시는 ES 05003.f의 먹는물 수질기준의 표시한계 및 결과표시에 따른다.

잘못된 내용 수정

누락된 변경 내용 반영

표준화 지침 부합화

표준화 지침 부합화, 용어 표기 통일

- 용어 표기 통일

- 용어 표기 통일

잘못된 내용 수정

누락된 변경 내용 반영

- 개정된 분류번호로 수정

ES 05701.1d

저온일반세균-평판집락법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

해당 희석배수에 사용된 각 평판 내의 집락수를 측정하여 합한 다음 사용한 평판수로 나누어 평판당 평균집락수를 구하여 여기에 해당 희석배수를 곱한 수치를 저온일반세균수(CFU)로 하며, ‘저온일반세균수(CFU)/mL’로 표기한다. 저온일반세균수가 100이상일 때에는 높은 단위 숫자로부터 3단계 이하는 사사오입하여 유효숫자를 2단계로 끊어 그 이하를 0으로 한 수치를 mL 중의 저온일반세균수로 하고 저온일반세균수가 100미만일 때에는 소숫점 이하는 버린 수치를 mL 중의 저온일반세균수로 기재한다.

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9215, 21st edition, Heterotrophic plate count

9.2 HPA National Standard Method, W4, Colony count by the pour plate method

9.3 일본 상수시험방법 8.1.2.2, 2001, 종속영양세균-R2A 한천배지법

10.0 부록

“내용 없음”

1.3  “내용 없음”

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

해당 희석배수에 사용된 각 평판 내의 집락수를 측정하여 합한 다음 사용한 평판수로 나누어 평판당 평균집락수를 구하고, 여기에 해당 희석배수를 곱한 수치를 저온일반세균수(CFU)로 하며, ‘저온일반세균수(CFU)/mL’로 표기한다. 저온일반세균수가 100 이상일 때에는 높은 단위 숫자로부터 3단계 이하는 사사오입하여 유효숫자를 2단계로 끊어 그 이하를 0으로 한 수치를 mL 중의 저온일반세균수로 하고, 저온일반세균수가 100 미만일 때 소숫점을 포함하는 경우에는 반올림하여 정수로 표기한다.

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9215, 23rd edition,  Heterotrophic plate count, (2017)

9.2 HPA National Standard Method, W4,  Colony count by the pour plate method, (2004)

9.3 일본 상수시험방법 8.1.2.2, 종속영양세균-R2A 한천배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

- 참고자료 개정판 반영 및 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05702.1c

(중온)일반세균-평판집락법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

해당 희석배수에 사용된 각 평판 내의 집락수를 측정하여 합한 다음 사용한 평판수로 나누어 평판당 평균집락수를 구하여 여기에 해당 희석배수를 곱한 수치를 저온일반세균수(CFU)로 하며, ‘(중온)일반세균수(CFU)/mL’로 표기한다. (중온)일반세균수가 100이상일 때에는 높은 단위 숫자로부터 3단계 이하는 사사오입하여 유효숫자를 2단계로 끊어 그 이하를 0으로 한 수치를 mL 중의 (중온)일반세균수로 하고 (중온)일반세균수가 100미만일 때에는 소숫점 이하는 버린 수치를 mL 중의 (중온)일반세균수로 기재한다.

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9215, 21st edition, Heterotrophic plate count

9.2 HPA National Standard Method, W4, Colony count by the pour plate method

9.3 일본 상수시험방법 8.1.1.2, 2001, 일반세균-표준한천배지법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

해당 희석배수에 사용된 각 평판 내의 집락수를 측정하여 합한 다음 사용한 평판수로 나누어 평판당 평균집락수를 구하고, 여기에 해당 희석배수를 곱한 수치를 저온일반세균수(CFU)로 하며, ‘(중온)일반세균수(CFU)/mL’로 표기한다. (중온)일반세균수가 100 이상일 때에는 높은 단위 숫자로부터 3단계 이하는 사사오입하여 유효숫자를 2단계로 끊어 그 이하를 0으로 한 수치를 mL 중의 (중온)일반세균수로 하고, (중온)일반세균수가 100 미만일 때 소숫점을 포함하는 경우에는 반올림하여 정수로 표기한다.

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9215, 23rd edition, Heterotrophic plate count, (2017)

9.2 HPA National Standard Method, W4, Colony count by the pour plate method, (2004)

9.3 일본 상수시험방법 8.1.1.2, 일반세균-표준한천배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

- 참고자료 개정판 반영 및 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05703.1c

총대장균-

시험관법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.2 마개달린 시험관

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 9131, Total coliform: Multiple tube fermentation technique

9.2 Standard Method 9221, 21st edition, Multiple-tube fermentation technique for members of the coliform group

9.3 HPA National Standard Method, D5, Enumeration of coliforms and presumptive Escherichia coli by the most probable number(MPN) technique

9.4 일본 상수시험방법 8.2.1.2, 총대장균군-유당부이온 브릴리안토그린 유당담즙 부이온 배지법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.2 마개달린 유리시험관

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 9131, Total coliform: Multiple tube fermentation technique, (1986)

9.2 Standard Method 9221, 21st edition, Multiple-tube fermentation technique for members of the coliform group, (2005)

9.3 <삭제>

9.3 일본 상수시험방법 8.2.1.2, 총대장균군-유당부이온 브릴리안토그린 유당담즙 부이온 배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 연도표기 및 오래된 시험법 삭제

표준화 지침 부합화

ES 05703.2c

총대장균-

막여과법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.9 마개달린 시험관

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 9132, Total coliform: Membrane filter technique

9.2 Standard Method 9222, 21st edition, Membrane filter technique for members of the coliform group

9.3 HPA National Standard Method, W2, Enumeration of coliform bacteria and Escherichia coli by membrane filtration

9.4 일본 상수시험방법 8.2.3, 총대장균군 MF 엔도배지법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.9 마개달린 유리시험관

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 US EPA Method 9132, Total coliform: Membrane filter technique, (1986)

9.2 Standard Method 9222, 21st edition, Membrane filter technique for members of the coliform group, (2005)

9.3 <삭제>

9.3 일본 상수시험방법 8.2.3, 총대장균군 MF 엔도배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 연도표기 및 오래된 시험법 삭제

표준화 지침 부합화

ES 05703.3c

총대장균군-

효소기질이용법

3.2 마개달린 시험관

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9223, 21st edition, Enzyme substrate coliform test

9.2 HPA National Standard Method, W18, Enumeration of coliforms and Escherichia coli by IDEXX(Colilert 18) Quanti-TrayTM

9.3 일본 상수시험방법 8.2.1.3, 총대장균군-특정효소기질이용법

10.0 부록

“내용 없음

3.2 마개달린 유리시험관

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9223, 21st edition, Enzyme substrate coliform test, (2005)

9.2 HPA National Standard Method, W18,  Enumeration of coliforms and Escherichia coli by IDEXX(Colilert 18) Quanti-TrayTM, (2005)

9.3 일본 상수시험방법 8.2.1.3, 총대장균군-유당부이온 브릴리안토그린 유당담즙 부이온 배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

- 문구 및 표기방법 수정

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05704.1d

분원성대장균군-

시험관법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9222, 21st edition, Membrane filter technique for members of the coliform group

9.2 HPA National Standard Method, D5, Enumeration of coliforms and presumptive Escherichia coli by the most probable number(MPN) technique

9.3 일본 상수시험방법 8.2.3, 2001, 분원성대장균군 M-FC한천배지법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9222, 21st edition, Membrane filter technique for members of the coliform group, (2005)

9.2 <삭제>

9.2 일본 상수시험방법 8.2.3, 분원성대장균군 M-FC한천배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 연도표기 및 오래된 시험법 삭제

표준화 지침 부합화

ES 05705.1d

대장균-

시험관법

대장균-시험관법

(Escherichia coli-Multiple Tube Fermentation Technique)

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 시험관

3.7 자외선 검출기

366 nm 부근 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.2.2 배양 후 암실에서 자외선램프(366 ㎚, 6와트)를 사용하여 MUG에 의한 형광을 관찰할 수 없으면 대장균 음성으로 판정하고 형광이 나타나면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9221, 21st edition, Multiple-tube fermentation technique for members of the coliform group

9.2 HPA National Standard Method, D5, Enumeration of coliforms and presumptive Escherichia coli by the most probable number(MPN) technique

10.0 부록

“내용 없음

대장균-시험관법

(Escherichia coli-Multiple Tube Fermentation Technique)

1.3  “내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 유리시험관

3.7 자외선 검출기

365 nm ~ 366 nm (6 와트) 범위의 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.2.2 배양 후 암실에서 자외선램프(365 nm ~ 366 ㎚, 6 와트)를 사용하여 MUG에 의한 형광을 관찰할 수 없으면 대장균 음성으로 판정하고 형광이 나타나면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9221, 23rd edition,  Multiple-tube fermentation technique for members of the coliform group, (2017)

9.2 <삭제>

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 개정판 반영 및 오래된 시험법 삭제

표준화 지침 부합화

ES 05705.2d

대장균-

막여과법

대장균-막여과법

(Escherichia coli-Membrane Filtration Method)

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.9 자외선 검출기

366 nm 부근 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.2.2 배양 후 암실에서 자외선램프(366 nm, 6와트)를 사용하여 형광유무를 관찰한다. 광택 집락 주위의 무리에서 형광이 나타나면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9222, 21st edition, Membrane filter technique for members of the coliform group

9.2 HPA National standard method, W2, Enumeration of coliform bacteria and Escherichia coli by membrane filtration

10.0 부록

“내용 없음

대장균-막여과법

(Escherichia coli-Membrane Filtration Method)

1.3  “내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.9 자외선 검출기

365 nm ~ 366 nm (6 와트) 범위의 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.2.2 배양 후 암실에서 자외선램프(365 nm ~ 366 nm, 6 와트)를 사용하여 형광유무를 관찰한다. 광택 집락 주위의 무리에서 형광이 나타나면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9222, 23rd edition, Membrane filter technique for members of the coliform group, (2017)

9.2 <삭제>

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기 및 오래된 시험법 삭제

표준화 지침 부합화

ES 05705.3d

대장균-

효소기질이용법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 시험관

3.4 자외선 검출기

365 nm 부근 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.1 효소기질이용법에 의한 대장균 시험은 총대장균군의 효소기질이용법과 동일한 방법으로 시험하고 자외선 램프(366 nm, 6와트)를 사용하여 암실에서 형광을 관찰하여 MUG(4-methyl-umbelliferyl-β-D-glucuronide)에 의한 형광이 관찰되면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9223, 21st edition, Enzyme substrate coliform test

9.2 HPA National Standard Method, W18, Enumeration of coliforms and Escherichia coli by IDEXX(Colilert 18) Quanti-TrayTM

9.3 일본 상수시험방법 8.2.2.1, 2001, 대장균 특정효소기질배지법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3. 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 유리시험관

3.4 자외선 검출기

365 nm ~ 366 nm (6 와트) 범위의 파장 조사가 가능하여야 한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2 시험방법

7.2.1 효소기질이용법에 의한 대장균 시험은 총대장균군의 효소기질이용법과 동일한 방법으로 시험하고 자외선 램프(365 nm  ~ 366 nm, 6 와트)를 사용하여 암실에서 형광을 관찰하여 MUG(4-methyl-umbelliferyl-β-D-glucuronide)에 의한 형광이 관찰되면 대장균 양성으로 판정한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9223, 23rd edition, Enzyme substrate coliform test, (2017)

9.2 HPA National Standard Method, W18, Enumeration of coliforms and Escherichia coli by IDEXX(Colilert 18) Quanti-TrayTM, (2005)

9.3 일본 상수시험방법 8.2.2.1, 대장균 특정효소기질배지법, (2001)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

standard method 9215, 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05706.1d

분원성연쇄상구균-

시험관법

1.1 목적

이 시험기준은 샘물, 먹는샘물, 먹는해양심층수, 염지하수 및 먹는염지하수에 존재하는 분원성연쇄상구균을 분석함에 있어 검사결과의 정확과 통일을 기하기 위해 필요한 제반사항에 대하여 규정함을 목적으로 한다.

1.3 간섭물질

“내용 없음”

2.1 분원성연쇄상구균

락토바실라세아(Lactobacillaceae)과에 속하는 연쇄상구균 속 중에 장내에서 발견되는 세균으로 그람 양성 구균이며 과산화수소분해효소(catalase) 음성으로 45 ℃에서 40 % 담즙과 0.04 % 아자이드화나트륨(sodium azide)에서 성장하는 균을 말한다.

3.2 페트리접시

지름 약 9 cm, 높이 약 1.5 cm의 유리제품(65 cm2) 또는 1회용 플라스틱제품(57 cm2)으로 멸균된 것을 사용한다.

3.3 마개달린 시험관 혹은 유리용기

대시험관(안지름 32 mm, 높이 200 mm)으로 플라스틱이나 금속으로 마개를 할 수 있고 고압증기 멸균할 수 있어야 한다.

4.1.2 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 2의 조성대로 넣고 가열하여 녹인 후, pH가 (7.1 ± 0.2)가 되도록 조정한 다음 121 ℃에서 15분간 고압증기멸균하고 50 ℃ ～ 55 ℃까지 식힌 후 멸균된 페트리접시에 약 15 mL씩 무균적으로 나누어 넣고 굳혀서 평판배지를 조제한다.

표 2. 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지(enterococcosel agar)

성 분	조 성
펩톤 C(peptone C)	17.0 g
펩톤 B(peptone B)	3.0 g
효모추출물(yeast extract)	5.0 g
세균학적 담즙분말	10.0 g
염화나트륨(sodium chloride, NaCl, 분자량 : 58.50)	5.0 g
시트르산나트륨(trisodium citrate, Na3C6H5O7, 분자량 : 258.07)	1.0 g
에스큘린(esculin, C15H16O9, 분자량 : 340.29)	1.0 g
시트르산제이철암모늄(ferric ammonium citrate, FeSO(NH4)SO4, 분자량 : 217.80)	0.5 g
아자이드나트륨(sodium azide, NaN3, 분자량 : 65.01)	0.25 g
한천(agar, (C12H18O9)n)	15.0 g

<추  가>

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.2 확정시험

7.2.2.1 추정시험에서 흐림을 확인한 모든 시험관으로부터 1 백금이씩을 취하여 각각 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지(enterococcosel agar)에 획선 접종하여 (35.0 ± 0.5) ℃에서 (24 ± 2)시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9230 B, 21st edition, Fecal Streptococcus and Enterococcus groups-Multiple Tube technique

9.2 일본 상수시험방법 5.4, 2001, 분원성연쇄구균

10.0 부록

“내용 없음

1.1 목적

이 시험기준은 샘물, 먹는샘물, 먹는해양심층수, 염지하수 및 먹는염지하수에 존재하는 분원성연쇄상구균을 분석함에 있어 검사결과의 정확성과 통일성을 제공하기 위해 필요한 제반사항에 대하여 규정함을 목적으로 한다.

1.3  “내용 없음”

2.1 분원성연쇄상구균

스트렙토코카세아(Streptoccocaceae)과에 속하는 연쇄상구균 속 중에 장내에서 발견되는 세균으로 그람 양성 구균이며 과산화수소분해효소(catalase) 음성으로 45 ℃에서 40 % 담즙과 0.04 % 아자이드화나트륨(sodium azide)에서 성장하는 균을 말한다.

3.2 마개달린 유리시험관

대시험관(안지름 32 mm, 높이 200 mm)으로 플라스틱이나 금속으로 마개를 할 수 있고 고압증기 멸균할 수 있어야 한다.

3.3 페트리접시

지름 약 9 cm, 높이 약 1.5 cm의 유리제품(65 cm2) 또는 1회용 플라스틱제품(57 cm2)으로 멸균된 것을 사용한다.

4.1.2 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 2 또는 표 3의 조성대로 넣고 가열하여 녹인 후, pH가 (7.1 ± 0.2)가 되도록 조정한 다음 121 ℃에서 15분간 고압증기멸균하고 50 ℃ ～ 55 ℃까지 식힌 후 멸균된 페트리접시에 약 15 mL씩 무균적으로 나누어 넣고 굳혀서 평판배지를 조제한다.

표 2. 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지(enterococcosel agar)

성 분	조 성
펩톤 C(peptone C)	17.0 g
펩톤 B(peptone B)	3.0 g
효모추출물(yeast extract)	5.0 g
세균학적 담즙분말	10.0 g
염화나트륨(sodium chloride, NaCl, 분자량 : 58.50)	5.0 g
시트르산나트륨(trisodium citrate, Na3C6H5O7, 분자량 : 258.07)	1.0 g
에스큘린(esculin, C15H16O9, 분자량 : 340.29)	1.0 g
시트르산제이철암모늄(ferric ammonium citrate, FeSO(NH4)SO4, 분자량 : 217.80)	0.5 g
아자이드나트륨(sodium azide, NaN3, 분자량 : 65.01)	0.25 g
한천(agar, (C12H18O9)n)	15.0 g

표 3. 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지(Bile esculin azide agar)

성 분	조 성
효모추출물(yeast extract)	5.0 g
프로테오스 펩톤 3(proteose peptone N0. 3)	3.0 g
트립톤(tryptone)	17.0 g
소담즙(oxgall)	10.0 g
에스큘린(esculin, C15H16O9, 분자량 : 340.29)	1.0 g
시트르산제이철암모늄(ferric ammonium citrate)	0.5 g
염화나트륨(sodium chloride, NaCl, 분자량 : 58.50)	5.0 g
아자이드나트륨(sodium azide, NaN3, 분자량 : 65.01)	0.15 g
한천(agar, (C12H18O9)n)	15.0 g

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.2 확정시험

7.2.2.1 추정시험에서 흐림을 확인한 모든 시험관으로부터 1 백금이씩을 취하여 각각 분원성연쇄상구균 확정시험용 배지(enterococcosel agar 또는 Bile esculin azide agar)에 획선 접종하여 (36.0 ± 1.0) ℃에서 (24 ± 2)시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9230 B, 23rd edition, Fecal Streptococcus and Enterococcus groups-Multiple Tube technique, (2017)

9.2 일본 상수시험방법 5.4, 분원성연쇄구균, (2001)

10.0  “내용 없음”

- 타 시험법과 통일성을 기하기 위해 문구 수정

표준화 지침 부합화

- 분류군 오류로 인한 학명 수정

- 타 시헙법과 순서 통일

- 문구 및 표기방법 수정

- standard method 9230, 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- standard method 9230, 23rd edition (2017) 반영

- 표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05707.1d

녹농균-

시험관법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

2.1 녹농균

슈도모나스과의 운동성을 지니는 그람음성 호기성 간균으로서 단일 혹은 쌍으로 존재하며 짧은 사슬을 형성하기도 하고 산화효소에 양성을 나타내며, 자외선(360 ± 20) nm 조사 시 형광을 띠고 아세트아미드(acetamide)로부터 암모니아를 생성하는 세균을 말한다.

3.0 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 시험관

3.4 자외선 검출기(UV detector, 366 nm)

366 nm 부근 파장 조사가 가능하여야 한다.

3.6 배양기

배양온도를 (35.0 ± 0.5) ℃와 (41.5 ± 0.5) ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 3배 농후 녹농균 추정시험용 배지가 25 mL씩 들어 있는 시험관 5개에 각각 접종 후, (35.0 ± 0.5) ℃에서 (24 ± 2) 시간 배양한다.

7.2.1.2 암실에서 자외선램프로 장파장의 자외선(366 nm)을 조사하여 녹색을 띠는 형광의 유무를 관찰하여 형광이 발생한 경우 추정시험 양성으로 한다.

7.2.2.1 추정시험에서 녹색을 띠는 형광을 확인한 모든 시험관에서 바로 백금이를 이용하여 추정시험 양성 배지의 윗부분을 약 0.1 mL 취하여 녹농균 확정배지에 접종하여 (35.0 ± 0.5) ℃로 24시간 ～ 36시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 일본, 상수시험방법, 5.5, 녹농균

9.2 Standard Method 9213 F, 21st edition, Multiple-Tube Technique for Pseudomonas aeruginosa

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

2.1 녹농균

슈도모나스(Pseudomonas)과의 운동성을 지니는 그람음성 호기성 간균으로서 단일 혹은 쌍으로 존재하며 짧은 사슬을 형성하기도 하고 산화효소에 양성을 나타내며, 자외선(365 nm ~ 366 nm 범위, 6  와트) 조사 시 형광을 띠고 아세트아미드(acetamide)로부터 암모니아를 생성하는 세균을 말한다.

3.0 분석기기 및 기구

3.2 마개달린 유리시험관

3.4 자외선 검출기

365 nm ~ 366 nm (6 와트) 범위의 파장 조사가 가능하여야 한다.

3.6 배양기

배양온도를 (36.0 ± 1.0) ℃와 (41.0 ± 1.0) ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 3배 농후 녹농균 추정시험용 배지가 25 mL씩 들어 있는 시험관 5개에 각각 접종 후, (36.0 ± 1.0) ℃에서 (24 ± 2) 시간 배양한다.

7.2.1.2 암실에서 자외선램프로 장파장의 자외선(365 nm ~ 366 nm)을 조사하여 녹색을 띠는 형광의 유무를 관찰하여 형광이 발생한 경우 추정시험 양성으로 한다.

7.2.2.1 추정시험에서 녹색을 띠는 형광을 확인한 모든 시험관에서 바로 백금이를 이용하여 추정시험 양성 배지의 윗부분을 약 0.1 mL 취하여 녹농균 확정배지에 접종하여 (36.0 ± 1.0) ℃로 24시간에서 36시간까지 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 일본, 상수시험방법, 5.5, 녹농균, (2001)

9.2 Standard Method 9213 F, 23rd edition, Multiple-Tube Technique for Pseudomonas aeruginosa, (2017)

10.0  “내용 없음”

- 영문 학명 추가 및 대장균 시험법과 동일하게 자외선 파장범위 수정

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 다른 시험항목과 통일을 위한 파장범위 수정

- standard method 9213 F., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- standard method 9213 F., 23rd edition (2017) 반영

- standard method 9213 F., 23rd edition (2017) 반영

- standard method 9213 F., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05709.1d

살모넬라-

시험관법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.2 마개달린 시험관 혹은 유리용기

약 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관이나 유리병 혹은 이에 상응하는 용기를 사용한다.

<추 가>

3.3 백금이

3.4 배양기

배양온도를 35 ℃, 37 ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.5 광학현미경

4.1.1 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3× Selenite broth)

표 1. 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3 × Selenite broth) 조성

성 분	조 성
트립톤(tryptone)	15.0 g
락토스(lactose, C12H22O11, 분자량 : 342.30)	12.0 g
셀레나이트(selenite)	12.0 g
인산일수소나트륨(sodium phosphate, dibasic, Na2HPO4, 분자량 : 141.95)	30.0 g

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 증균배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지)가 25 mL씩 들어있는 시험관 5개에 접종하고 37 ℃에서 18시간 ～ 24시간 배양한다. 배양시간이 지연되면 대장균 등 다른 균이 자라므로 배양시간을 엄수한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1  Standard Method 9260 B, 21st edition, Detection of Pathogenic Bacteria-General Qualitative Isolation and Identification Procedures for Salmonella

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.2 마개달린 유리시험관

약 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관을 사용한다.

3.3 페트리접시

지름 약 9 cm, 높이 1.5 cm의 유리제품(65 cm2) 또는 1회용 플라스틱(57 cm2)으로 멸균된 것을 사용한다.

3.4 백금이

3.5 배양기

배양온도를 (36.0 ± 1.0)℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.6 광학현미경

4.1.1 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3× Selenite broth)

표 1. 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3 × Selenite broth) 조성

성 분	조 성
트립톤(tryptone)	15.0 g
락토오스(lactose, C12H22O11, 분자량 : 342.30)	12.0 g
셀레나이트(selenite)	12.0 g
인산일수소나트륨(sodium phosphate, dibasic, Na2HPO4, 분자량 : 141.95)	30.0 g

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 증균배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지)가 25 mL씩 들어있는 시험관 5개에 접종하고 (36.0 ± 1.0) ℃에서 24시간 배양한다. 배양시간이 지연되면 대장균 등 다른 균이 자라므로 배양시간을 엄수한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1  Standard Method 9260 B, 23rd edition, Detection of Pathogenic Bacteria-General Qualitative Isolation and Identification Procedures for Salmonella, (2017)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 시험과정 중 고체배지 사용에 따른 기구 추가

- 자구 수정

standard method 9260 B., 23rd edition (2017) 반영

- 영문표기법에 따라 시약명 수정

표준화 지침 부합화

- standard method 9260 B., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05709.2d

살모넬라-

막여과법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 μm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로서 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

<추 가>

3.5 페트리접시

<추 가>

3.6 핀셋

3.7 가위

3.8 배양기

배양온도를 35 ℃, 37 ℃ 로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.9 광학현미경

4.1.2 추정시험용 배지(비스무스 아황산염 선택배지, Bismuth sulfite agar)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 2의 조성대로 넣고 완전 용해될 때까지 가열하며, 이 때 배지를 고압증기멸균해서는 안된다. 50 ℃ ～ 55 ℃까지 식힌 후 멸균된 페트리접시에 약 20 mL 분주하여 굳힌다. 가열시 끓는 상태가 1분 ∼ 2분 이상 지속되지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관하며 4일 이상 저장하지 않는다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.1.2 여과막은 무균조작이 가능한 가위로 잘라서 증균배지(셀레나이트 액체배지)가 7 mL ～ 10 mL 가량 들어있는 시험관에 넣어 37 ℃에서 18시간 ～ 24시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1  Standard Method 9260 B, 21st edition, Detection of Pathogenic Bacteria-General Qualitative Isolation and Identification Procedures for Salmonella

9.2 HPA National Standard Method, W7, Detection of Salmonella species

9.3 한국표준협회, KS I ISO 6340(2013), 수질-살모넬라종 검출 방법

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 μm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

3.5 마개달린 유리시험관

약 50 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관을 사용한다.

3.6 페트리접시

3.7 백금이

고리의 안지름이 약 3 mm인 백금이를 사용한다.

3.8 핀셋

3.9 가위

3.10 배양기

배양온도를 (36.0 ± 1.0)℃ 로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.11 광학현미경

4.1.2 추정시험용 배지(비스무스 아황산염 선택배지, Bismuth sulfite agar)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 2의 조성대로 넣고 완전 용해될 때까지 가열하며, 이 때 배지를 고압증기멸균해서는 안된다. 50 ℃ ～ 55 ℃까지 식힌 후 pH를 (7.6 ± 0.1)로 조절하고 멸균된 페트리접시에 약 20 mL 분주하여 굳힌다. 가열시 끓는 상태가 1분 ∼ 2분 이상 지속되지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관하며 4일 이상 저장하지 않는다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.1.2 여과막은 무균조작이 가능한 가위로 잘라서 증균배지(셀레나이트 액체배지)가 7 mL ～ 10 mL 가량 들어있는 시험관에 넣어 (36.0 ± 1.0) ℃에서 24시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1  Standard Method 9260 B, 23rd edition, Detection of Pathogenic Bacteria-General Qualitative Isolation and Identification Procedures for Salmonella, (2017)

9.2 <삭제>

9.3 <삭제>

9.2 KS I ISO 19250, “수질-살모넬라 검출 방법”, 환경부, (2019)

10.0  “내용 없음”

- 시험과정 중 시험관 사용에 따른 기구 추가

- 자구 수정

standard method 9260 B., 23rd edition (2017) 반영

- 시험관법과 통일

표준화 지침 부합화

- standard method 9260 B., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05710.1d

쉬겔라-

시험관법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.2 마개달린 시험관 혹은 유리용기

약 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관이나 유리병 혹은 이에 상응하는 용기를 사용한다.

<추 가>

3.3 백금이

3.4 배양기

배양온도를 35 ℃, 37 ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.5 광학현미경

4.1.1 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3× Selenite broth)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 1의 조성대로 넣고 60 ℃ ～ 70 ℃에서 가열용해한 후 멸균된 시험관에 25 mL씩 무균적으로 넣고 식힌다. 이 때 끓여서 녹이지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 증균배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지)가 25 mL씩 들어있는 시험관 5개에 접종하고 37 ℃에서 18시간 ～ 24시간 배양한다. 배양시간이 지연되면 대장균 등 다른 균이 자라므로 배양시간을 엄수한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9260 E, 21st edition, Detection of Pathogenic Bacteria-Shigella

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.2 마개달린 유리시험관

약 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관을 사용한다.

3.3 페트리접시

지름 약 9 cm, 높이 1.5 cm의 유리제품(65 cm2) 또는 1회용 플라스틱(57 cm2)으로 멸균된 것을 사용한다.

3.4 백금이

3.5 배양기

배양온도를 (36.0 ± 1.0)℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.6 광학현미경

4.1.1 증균 배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지, 3× Selenite broth)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 1의 조성대로 넣고 pH를 (7.0 ± 0.2)로 조절한다. 60 ℃ ～ 70 ℃에서 가열용해한 후 멸균된 시험관에 25 mL씩 무균적으로 넣고 식힌다. 이 때 끓여서 녹이지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.1.1 시료 50 mL씩을 증균배지(3배 농후 셀레나이트 액체배지)가 25 mL씩 들어있는 시험관 5개에 접종하고 (36.0 ± 1.0) ℃에서 24시간 배양한다. 배양시간이 지연되면 대장균 등 다른 균이 자라므로 배양시간을 엄수한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9260 E, 23rd edition, Detection of Pathogenic Bacteria-Shigella, (2017)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 시험과정에 맞추어 문구 수정

- 시험과정 중 고체배지 사용에 따른 기구 추가

- 자구 수정

standard method 9260 E., 23rd edition (2017) 반영

- standard method 9260 E., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- standard method 9260 E., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화

ES 05710.2d

쉬겔라-

막여과법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 µm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로서 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

<추 가>

3.5 페트리접시

3.6 핀셋

3.7 가위

3.8 배양기

배양온도를 35 ℃, 37 ℃ 로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.9 광학현미경

4.1.1 증균 배지(셀레나이트 액체배지; Selenite broth)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 1의 조성대로 넣고 60 ℃ ～ 70 ℃에서 가열용해한 후 멸균된 시험관에 7 mL ~ 10 mL씩 무균적으로 넣고 식힌다. 이 때 끓여서 녹이지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관한다.

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

7.2.1.2 여과막은 무균조작이 가능한 가위로 잘라서 증균배지(셀레나이트 액체배지)가 7 mL ～ 10 mL 가량 들어있는 시험관에 넣어 37 ℃에서 18시간 ～ 24시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9260 E, 21st edition, Detection of Pathogenic Bacteria-Shigella

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 µm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

3.5 마개달린 유리시험관

약 50 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관을 사용한다.

3.6 페트리접시

3.7 백금이

고리의 안지름이 약 3 mm인 백금이를 사용한다.

3.8 핀셋

3.9 가위

3.10 배양기

배양온도를 (36.0 ± 1.0)℃ 로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

3.11 광학현미경

4.1.1 증균 배지(셀레나이트 액체배지; Selenite broth)

가급적 상용화된 완성제품을 사용하고, 제조하여 사용할 때에는 정제수 1 L에 표 1의 조성대로 넣고 pH를 (7.0 ± 0.2)로 조절한다. 60 ℃ ～ 70 ℃에서 가열용해한 후 멸균된 시험관에 7 mL ~ 10 mL씩 무균적으로 넣고 식힌다. 이 때 끓여서 녹이지 않도록 한다. 조제된 배지는 2 ℃ ～ 8 ℃에 보관한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

7.2.1.2 여과막은 무균조작이 가능한 가위로 잘라서 증균배지(셀레나이트 액체배지)가 7 mL ～ 10 mL 가량 들어있는 시험관에 넣어 (36.0 ± 1.0) ℃에서 24시간 배양한다.

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 Standard Method 9260 E, 23rd edition, Detection of Pathogenic Bacteria-Shigella, (2017)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

- 시험과정 중 시험관 사용에 따른 기구 추가

- 자구 수정 및 standard method 9260 E., 23rd edition (2017) 반영

- 시험관법과 통일

표준화 지침 부합화

- standard method 9260 E., 23rd edition (2017) 반영

표준화 지침 부합화

- 참고자료 개정판 반영

표준화 지침 부합화

ES 05711.1d

여시니아균-

막여과법

1.3 간섭물질

“내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 µm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로서 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

3.8 마개달린 시험관 혹은 유리용기

15 mL ~ 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관이나 유리병 혹은 이에 상응하는 용기를 사용한다.

3.9 배양기

배양온도를 25 ℃ ∼ 28 ℃와 37 ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다..

4.2 표준용액

“내용 없음”

6.0 정도보증/정도관리(QA/QC)

“내용 없음”

7.0 분석절차

7.1 전처리

“내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과의 표기

9.0 참고자료

9.1 KS J ISO 10273 “식품 및 동물사료의 미생물학 ㅡ 추정 병원성 여시니아 엔테로콜리티카 검출을 위한 평판법”

9.2 Standard Method 9260 K, 21st edition, Yersinia enterocolitica

10.0 부록

“내용 없음

1.3  “내용 없음”

3.0 분석기기 및 기구

3.1 여과막

공경 0.45 µm, 지름 47 mm 크기의 미생물 분석용 여과막으로 막의 한 면에 격자가 그려진 멸균된 것을 사용한다.

3.8 마개달린 유리시험관

15 mL ~ 100 mL 부피의 고압증기멸균 가능하고 투명한 붕규산 재질의 마개달린 유리시험관을 사용한다.

3.9 배양기

배양온도를 25 ℃ ∼ 28 ℃와 37 ℃로 유지할 수 있는 것을 사용한다.

4.2  “내용 없음”

6.0  “내용 없음”

7.0 분석절차

7.1  “내용 없음”

8.0 결과보고

8.1 결과 표기

9.0 참고자료

9.1 KS J ISO 10273 “식품 및 동물사료의 미생물학 ㅡ 추정 병원성 여시니아 엔테로콜리티카 검출을 위한 평판법”, (2012)

9.2 Standard Method 9260 K, 23rd edition, Yersinia enterocolitica, (2017)

10.0  “내용 없음”

표준화 지침 부합화

-문구 수정

- 문구 및 표기방법 수정

- 문구 수정

표준화 지침 부합화

- 문구 및 표기방법 수정

- 참고자료 개정판 반영, 연도표기

표준화 지침 부합화